RECOLECCIÓN DE
MUESTRAS PARA CULTIVO “ANIMALES”
LARRAÑAGA
TORRÓNTEGUI RAMÓN ANTONIO
Médico Veterinario
Zootecnista FESC- Universidad Nacional Autónoma de México.
Respiratorias: Indicado para detectar enfermedades inflamatorias del tracto respiratorio superior e inferior por virus, bacterias, hongos, así como sensibilización a los antibióticos, antimicóticos. - Material en estudio: Secreción de orofaringe, cavidad nasal, aspirado de senos paranasales, lavado broncoalveolar. Para el transporte se utiliza un frasco con tapón naranja y un medio de transporte líquido, así como un hisopo en el aplicador. Este medio permite conservar el biomaterial sin modificaciones hasta 48 horas, a una temperatura de almacenamiento de +20 grados.
Procedimiento: Secreciones orofaríngea: si hay mucha mucosidad, retírela con una gasa estéril. Con un hisopo aplicador del kit de medio de transporte, recoja el material en el límite entre el tejido sano y el afectado. - Secreción nasal: si hay secreción purulenta, retírela con una gasa estéril empapada en solución salina estéril (0,9%). Introduzca el hisopo del aplicador del kit de medio de transporte en la fosa nasal hasta una profundidad de aproximadamente 0,5 a 1 cm, presionándolo contra la superficie mucosa de la parte superior de la fosa nasal. Recoja el material celular con movimientos rotatorios.
Aspirado sinusal: colocar el aspirado directamente en el medio líquido en un volumen no mayor a 0,3 ml. - Lavado broncoalveolar: Tras aspirar solución salina estéril de las vías respiratorias inferiores con una jeringa, humedezca generosamente el hisopo del aplicador del sistema de transporte con el material obtenido. Se permite añadir el lavado broncoalveolar directamente al medio de transporte líquido en un volumen no superior a 0,3 ml. Al tomar cualquier biomaterial: coloque el hisopo en el aplicador en el medio líquido, incluso si no se ha utilizado. Rompa el hisopo por la línea roja y cierre con el tapón naranja.
Almacenamiento y transporte: En el medio líquido, el material se conserva hasta 48 horas a una temperatura de almacenamiento de +20 grados C a +8 grados C.
Resultado: Se indica la presencia o ausencia de crecimiento de microflora, se realiza una evaluación cuantitativa de las bacterias cultivadas, y se realiza una determinación de sensibilidad si el resultado es positivo. - Interpretación del resultado: Normalmente, las secreciones de las vías respiratorias superiores no son estériles. Al interpretar los resultados del cultivo de secreciones de las vías respiratorias inferiores, no se puede descartar la contaminación de la muestra con la microflora normal de las vías respiratorias superiores. Además, debe tenerse en cuenta la contaminación de la muestra con bacterias de la piel. El cultivo dura 7 días.
Condiciones inaceptables para la investigación: El material almacenado durante más de 48 horas en el medio de transporte no es apto para la investigación, el material recogido en un medio de transporte incorrecto (por ejemplo, medio de gel Amies, medio Cary Blair) no es adecuado para la prueba. No se aceptará para la prueba el material recogido en un recipiente vacío (por ejemplo, una jeringa o un tubo de ensayo).
MUESTRA DE SECRECIONES OCULARES: Indicaciones para el estudio: Procesos inflamatorios en oftalmología (conjuntivitis, queratitis, blefaritis). El estudio se realiza antes de iniciar el tratamiento sistémico y local. Este estudio no determina la presencia de clamidia.
Material en estudio: Frotis conjuntival. - Se utiliza el sistema de transporte, que incluye un frasco con tapón naranja y un medio de transporte líquido, así como un hisopo en el aplicador.
Este medio permite conservar el biomaterial sin
modificaciones hasta 48 horas, a una temperatura de almacenamiento de +20
grados C.
Almacenamiento y transporte: En el medio líquido, el material se conserva hasta 48 horas a una temperatura de almacenamiento de +20 grados C a +8 grados C. Resultado: Se indica la presencia o ausencia de crecimiento de microflora, se realiza una evaluación cuantitativa de las bacterias cultivadas, y se realiza una determinación de sensibilidad si el resultado es positivo.
Interpretación del resultado: Normalmente, la secreción ocular no es estéril. Al interpretar el resultado del cultivo, es necesario considerar la contaminación de la muestra con bacterias de la piel. Duración del estudio: Hasta 7 días. El material almacenado durante más de 48 horas en el medio de transporte no es apto para la investigación. El material recolectado en un medio de transporte incorrecto (por ejemplo, medio de gel Amies o medio Cary Blair) no es adecuado para la prueba.
Indicaciones para el estudio: Historia de infertilidad, quistes/abscesos de próstata. El estudio se realiza antes de iniciar cualquier tratamiento. Si es necesario determinar la presencia de hongos levaduriformes y su sensibilidad a los antimicóticos, se prescribe adicionalmente al estudio y recolección.
Material en estudio: Secreciones cervicales, fracción prostática de espermatozoides, contenido de quiste/absceso de próstata. Se utiliza el sistema de transporte, que incluye un frasco con tapón naranja y un medio de transporte líquido, así como un hisopo en el aplicador. Este medio permite conservar el biomaterial sin modificaciones hasta 48 horas, a una temperatura de almacenamiento de +20 grados C. - Realizar una limpieza de los genitales externos del animal.
Para machos: se realiza un procedimiento de recolección de
esperma con separación en fracciones en tubos de ensayo estériles. Solo se
envía el esperma o la fracción prostática para análisis bacteriológico.
Coloque el hisopo en el aplicador del kit de medio de transporte sobre el biomaterial obtenido. Gire el hisopo para recoger el material y transfiéralo a un tubo de ensayo con medio líquido. Rompa la sonda por la línea roja y cierre la tapa del tubo de transporte. Se permite añadir no más de 0,3 ml de fracción espermática/prostática al medio de transporte líquido. En presencia de quistes en la próstata: bajo control ecográfico, aspire el líquido con una jeringa y transfiéralo a un tubo intermedio estéril con tapón amarillo. El volumen mínimo de biomaterial necesario para la recolección en un tubo de transporte es de 0,5 ml.
Coloque el hisopo en el aplicador del sistema de transporte en un tubo de ensayo con tapa amarilla, empápelo con el líquido recogido y sumérjalo en el medio (caliente el frasco con el medio de transporte líquido a temperatura ambiente antes de usarlo). ¡Rompe el aplicador en el punto de ruptura (línea marcada en rojo) y déjalo en el tubo de ensayo! Se permite introducir el líquido aspirado del quiste en el recipiente de transporte con el medio líquido, en un volumen no superior a 0,3 ml, directamente desde la jeringa. Con este método de introducción del biomaterial en el tubo de transporte, el hisopo del aplicador también se coloca en el medio, ¡aunque no se haya utilizado!
Para las hembras: bajo el control de un vaginoscopio, inyecte 5 ml de solución salina estéril al 0,9 % en el cuello uterino y aspire hacia atrás. Coloque el hisopo obtenido en un tubo intermedio estéril con tapa amarilla, baje el hisopo sobre el aplicador del kit de medio de transporte utilice movimientos rotatorios para “recoger” el material sobre el hisopo y sumérjalo en el medio (caliente el frasco con el medio de transporte líquido a temperatura ambiente antes de usarlo).
¡Rompe el aplicador en el punto de ruptura (línea marcada en
rojo) y déjalo en el tubo de ensayo!
Se permite añadir el hisopo cervical al recipiente de
transporte con el medio líquido, en un volumen máximo de 0,3 ml, directamente
desde la jeringa. Con este método de adición del biomaterial al tubo de
transporte, el hisopo del aplicador también se coloca en el medio ¡aunque no se
haya utilizado! Rompa el aplicador en el punto de ruptura (la línea está
marcada en rojo) y déjelo en el tubo.
Almacenamiento y transporte: En el medio líquido, el material se conserva hasta 48 horas a una temperatura de almacenamiento de +20 grados C a +8 grados C. Resultado: Se indica la presencia o ausencia de crecimiento de microflora, se realiza una evaluación cuantitativa de las bacterias cultivadas, y se realiza una determinación de sensibilidad si el resultado es positivo. Normalmente, las secreciones no son estériles. Al interpretar el resultado, no se puede descartar la contaminación de la muestra con microflora vaginal. Además, debe tenerse en cuenta la posible contaminación de la muestra con bacterias de la piel.
Al interpretar el resultado de la siembra de la fracción espermática/prostática, es necesario considerar la posible contaminación de la muestra con bacterias de la piel y la uretra. Normalmente, estas fracciones espermáticas son estériles. Duración del estudio: Hasta 7 días.
MUESTRA DE LIQUIDO POR PUNCIÓN: Procesos inflamatorios en las cavidades pleural, pericárdica, peritoneal; en la cavidad articular, canal espinal. El estudio se realiza antes de iniciar el tratamiento antimicrobiano. Si se sospecha inflamación causada por patógenos anaerobios (Clostridium perfrigens, Peptostreptococos spp.). Si es necesario determinar la presencia de hongos levaduriformes y su sensibilidad a los antimicóticos.
Material en estudio: Líquido aspirado de cavidades corporales, sinovial, líquido cefalorraquídeo y punción del oído medio/interno. Según el tipo de biomaterial, de 1 a 5 ml son suficientes para la recolección en el recipiente primario (jeringa o tubo estéril intermedio con tapón amarillo).
Medio de transporte y otros consumibles: Se utiliza una jeringa para aspirar el líquido. Para manipulaciones posteriores, se puede usar, para mayor comodidad, un tubo de ensayo estéril intermedio con tapa amarilla o trabajar directamente con un tubo de ensayo de transporte con medio líquido con tapa naranja. El medio de transporte permite mantener el biomaterial inalterado hasta 48 horas, a una temperatura de almacenamiento de +20 grados C.
Procedimiento: Para líquidos pleurales, pericárdicos y peritoneales. Realizar el procedimiento de punción de la cavidad correspondiente cumpliendo las normas de asepsia/antisepsia. Aspire el líquido con una jeringa y transfiéralo a un tubo intermedio estéril con tapa amarilla. El volumen mínimo de biomaterial requerido para la recolección en un tubo de transporte es de 5 ml.
Coloque el hisopo en el aplicador del sistema de transporte
en un tubo de ensayo con tapa amarilla, empape con el líquido recolectado y
sumérjalo en el medio (caliente el frasco con el medio de transporte líquido a
temperatura ambiente antes de usarlo).
Se permite introducir el líquido aspirado en el recipiente de
transporte con medio líquido, en un volumen no superior a 0,3 ml, directamente
desde la jeringa. Con este método de introducción del biomaterial en el tubo de
transporte, el hisopo del aplicador también se coloca en el medio, ¡aunque no
se haya utilizado! Rompa el aplicador en el punto de rotura (la línea está
marcada en rojo) y déjelo en el tubo.
Para el líquido sinovial y el líquido cefalorraquídeo, el orden de las manipulaciones es similar a los puntos 3 a 6. El volumen mínimo de líquido sinovial y cefalorraquídeo para una correcta recogida en el medio de transporte es de 1 ml. Al perforar la cavidad del oído medio/interno, el procedimiento es similar al punto 6, debido al pequeño volumen de líquido.
Resultado: Se indica la presencia o ausencia de crecimiento de microflora, se realiza una evaluación cuantitativa de las bacterias cultivadas, y se realiza una determinación de sensibilidad si el resultado es positivo. Interpretación del resultado: Normalmente, los fluidos de las cavidades corporales, la membrana sinovial y el líquido cefalorraquídeo son estériles. Es necesario observar rigurosamente las normas de asepsia y antisepsia al realizar una punción para evitar la contaminación de la muestra con bacterias de la piel. Duración del estudio: Hasta 7 días.
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