ANAPLASMOSIS EN
CABALLOS (LABORATORIO)
LARRAÑAGA
TORRÓNTEGUI RAMÓN ANTONIO
Médico Veterinario
Zootecnista FESC- Universidad Nacional Autónoma de México.
La anaplasmosis es uno de los factores que causan la muerte de animales de granja altamente productivos y reducen su capacidad reproductiva. La presencia de condiciones naturales y climáticas favorables, así como la violación o el incumplimiento de las instrucciones para la ejecución de las medidas veterinarias programadas, provocan una amplia propagación de la enfermedad, lo que ocasiona importantes daños económicos al ganado.
La detección de anaplasma en las primeras etapas de la enfermedad suele ser difícil debido a la peculiar forma del patógeno, lo que requiere métodos de diagnóstico serológico de alta sensibilidad. La disminución del valor económico y genético conduce al sacrificio forzoso y selectivo de animales, lo que aumenta las pérdidas económicas generales de las granjas por anaplasmosis.
La anaplasmosis granulocítica equina (EGA) es causada por Anaplasma phagocytophilum, un patógeno rickettsial transmitido por garrapatas del género Ixodes spp. El diagnóstico suele basarse en el conocimiento de la distribución geográfica de la infección, los signos clínicos típicos, los hallazgos de laboratorio anormales y la identificación de inclusiones citoplasmáticas características del patógeno en neutrófilos y eosinófilos en un frotis de sangre. A. phagocytophilum causa una enfermedad febril aguda en caballos, con letargo, rechazo del alimento, cojera y hemorragia.
La gravedad de los signos depende de la edad del caballo y la duración de la enfermedad. Los signos pueden ser leves. Los caballos menores de 1 año pueden presentar solo fiebre; los caballos de 1 a 3 años pueden presentar fiebre, depresión, inflamación leve de las extremidades y ataxia. Los adultos, y especialmente los caballos mayores, pueden presentar fiebre, anorexia parcial, depresión, reticencia a moverse, inflamación de las extremidades, petequias e ictericia. La fiebre, que alcanza su punto máximo unos 5 días después de la infección, suele ser de 39,5 a 40 grados C, pero puede alcanzar los 41,7 a 42,2 grados. La fiebre puede persistir de 6 a 12 días. Los síntomas se agravan con el paso de los días.
Otras manifestaciones clínicas de la infección aguda incluyen decúbito y miopatía grave. Cualquier infección concurrente, por ejemplo, herida en la pata o infección respiratoria puede agravarse. Los cuerpos de inclusión citoplasmáticos son bajos durante las primeras 48 horas y aumentan hasta el 5-40 % de los neutrófilos circulantes durante el pico de la bacteriemia. Los caballos afectados suelen presentar leucopenia o pancitopenia con trombocitopenia de moderada a grave. Se desarrollan petequias gruesas, equimosis y edema en el tejido subcutáneo y la fascia. La vasculitis es regional, afectando predominantemente el tejido subcutáneo y la fascia de las patas.
Durante la fase aguda de la infección, se observa fagocitofilia en las vacuolas citoplasmáticas de los neutrófilos y, ocasionalmente, en los eosinófilos. Los frotis sanguíneos teñidos con tinciones de Giemsa o Wright-Leishman revelan uno o más agregados laxos (mórulas o cuerpos de inclusión de 1,5 a 5 μm de diámetro) de organismos cocoides, cocobacilares o pleomórficos de color gris azulado a azul oscuro en el citoplasma de los neutrófilos.
El factor decisivo para el diagnóstico de anaplasmosis es el resultado positivo del examen microscópico de frotis sanguíneos teñidos según Romanovsky-Giemsa. Los métodos serológicos son los principales para la identificación de especies de anaplasmas. La PCR se ha utilizado durante muchos años para estudiar algunos aspectos de la epidemiología y la fisiopatología de la EGA y es un método muy sensible y específico para confirmar el diagnóstico, especialmente en las etapas tempranas y tardías de la enfermedad, cuando el número de microorganismos es demasiado pequeño para ser detectado por microscopía. Para fines clínicos, la muestra de elección es la sangre completa. El biomaterial se recoge antes del uso de medicamentos para tratamientos.
¡Para la prueba de PCR se requiere un tubo de ensayo con sangre! ¡La cual se extrae de la vena (venopunción) Después de agregar el biomaterial en el tubo de ensayo con tapa violeta/EDTA de potasio, gire con cuidado el tubo de ensayo 6 o 7 veces para mezclar el material con el anticoagulante. El contenedor deberá estar marcado con el nombre completo del propietario y el apodo del animal. Llene el formulario de referencia. La vida útil de la muestra a +2 °C +8 grados C es de 5 días, y si la conserva a -17 grados C, es de 2 semanas. El volumen mínimo de sangre requerido para el estudio es de 1 ml.
Interpretación de los resultados: Los resultados del estudio contienen información exclusivamente para médicos. El diagnóstico se basa en una evaluación exhaustiva de diversos indicadores e información adicional, y depende de los métodos de diagnóstico.
REFERENCIAS: 1) Parasitología Clínica Veterinaria. Octava edición. Anne M. Zajac; Gary A. Conboy. 2012 por John Wiley & Sons, Inc. 2) Los laboratorios Beaufort Cottage Guía de patología clínica equina. 2006 Rossdale & Partners 3) Patología Clínica Equina. Editado por Raquel M. Walton. 2014 por John Wiley & Sons, Inc. 4) Interpretación de diagnósticos de laboratorio equinos. Editado por Nicola Pusterla y Jill Higgins/ 2018 John Wiley & Sons, Inc.
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